УДК 579.61
ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ МИКРООРГАНИЗМОВ
К АНТИБИОТИКАМ В ДЕТСКИХ ОТДЕЛЕНИЯХ ГБУЗ КРАЕВАЯ КЛИНИЧЕСКАЯ БОЛЬНИЦА № 2 Г. КРАСНОДАРА
О.С. Костенко, Г.Г. Вяткина
Кубанский государственный университет, Краснодар

В статье был исследован и проанализирован уровень резистентности выделенных от пациентов микроорганизмов к антимикробным препаратам. Объектом служил биологический материал, взятый от больных детей, находившихся на лечении и обследовании в отделении новорожденных, реанимации новорожденных, патологии новорожденных и недоношенных детей и в отделениях перинатального центра: новорожденных с инфекционной патологией, реанимации и интенсивной терапии новорожденных. 

Современные методы лечения инфекционных заболеваний не могут обойтись без антибактериальных препаратов. Их открытие подняло медицину на новый уровень, но проблема антибиотикорезистентности возникла уже через несколько лет после открытия пенициллина. Это подтолкнуло ученых к поиску и созданию новых антибиотиков (Гавриленко, Грицкевич, 2018). Выяснилось, что бактерии быстрее развивают резистентность, чем ученые успевают создать или изменить антимикробных агентов. Развитие и распространение полирезистентности среди болезнетворных микроорганизмов создает серьезные проблемы при лечении инфекций. На каждый новый антибиотик бактерии дают адекватный ответ: появляются резистентные к нему штаммы, которые сводят на нет биологическую активность препарата. Неблагоразумные назначения врачей и массовое распространение самолечения являются основной причиной резистентности штаммов к антибиотикам (Дебабов, 2012).
Распространение микроорганизмов резистентных к антибиотикам связано с приобретением новой генетической информации. В различных источниках указаны одни и те же механизмы, которые отвечают за формирование у бактерий антибиотикорезистентности. Они связаны с появлением обходного пути обмена веществ, потерей активности антибиотика ферментами, структурным изменением в молекулах, являющихся мишенями для антимикробных препаратов, уменьшением проницаемости клеточной стенки, и работой, так называемых выкачивающих насосов (эффлюкс), а также способностью образовывать микробные биоплёнки. Существуют и другие подходы к преодолению устойчивости. К примеру, единовременное введение в макроорганизм ингибиторов резистентности, рациональное употребление антибиотических препаратов, осуществление поиска новых мишеней действия при помощи данных о геноме и использование в практической деятельности неантибиотических антибактериальных средств (Толочко, Несвижский, 2016).

Материал и методы
В качестве клинического материала выступали: мазки из ануса, зева, спинномозговая жидкость (СМЖ), отделяемое трахеи, смывы с кожных покровов, кровь, моча. Исследуемый биоматериал высевался на кровяной, шоколадный, маннит-солевой агар, среду Уриселект-4 и МакКонки. Исследуемые бактерии идентифицировались до вида методом матрично-ассоциированной лазерной десорбции/ионизации – времяпролётной масс-спектрометрии (система MALDI Biotyper Microflex LT, которую производит компания «Bruker Daltonics» (США)).
Определение чувствительности бактерий к антибиотикам проводилось диско-диффузионным методом (методом бумажных дисков). Помимо этого метода чувствительность бактерий устанавливали с помощью системы для автоматической идентификации и определения чувствительности к антимикробным препаратам VITEK 2 Compast производства компании «Biomerieux» (Франция), в основу положен метод серийных разведений.

Результаты и обсуждение
Объектом исследования служил биологический материал, взятый от больных детей, находившихся на лечении в детских отделениях ГБУЗ ККБ № 2. Из 423 штаммов выделенных микроорганизмов чаще всего встречались культуры Staphylococcus spp. (166 штаммов), Enterococcus spp. (82 штамма), Escherichia coli (56 штаммов) и Klebsiella spp. (44 штамма). Особенностью детских отделений является высокий процент пациентов с воспалительными заболеваниями дыхательных и мочевыводящих путей, расстройствами системы пищеварения (Основные направления…, 2018). Показатели по высеваемости бактерий согласуются с литературными данными, в соответствии с которыми в числе патогенов, которые вызывают сепсис у детей первого месяца жизни, преобладают коагулазонегативные стафилококки и грамотрицательные бактерий (Петрова, Шумливая, Каримуллина, 2018).
На основании сведений по резистентности микроорганизмов во всех детских отделениях, из числа используемых для определения чувствительности антибиотиков были выделены те, процент устойчивости к которым сравнительно высок (рисунок 1). 
Согласно данным, приведенным в рисунке 1 наибольшее количество штаммов Klebsiella pneumoniae устойчивы к пенициллинам (ампициллин, ампициллин/сульбактам), сульфаниламидам (триметоприм/сульфаметоксазол), цефалоспоринам 2 и 3 поколения (цефепим, цефтазидим, цефтриаксон, цефуроксим, цефуроксим/аксетил), фторхинолонам (ципрофлоксацин). Выделенные культуры K. oxytoca проявили анибиотикорезистентность к пенициллинам (ампициллин, амоксицилин/клавулант, пиперацилин/тазобактам), тетрациклинам (тайгециклин), цефалоспоринам 2 и 3 поколения (цефепим, цефоперазон/сульбактам, цефтазидим) и фторхинолонам (ципрофлоксацин). Выявленные культуры кишечной палочки оказались наиболее резистентными к пенициллинам (ампициллин, ампициллин/сульбактам), тетрациклинам, сульфаниламидам (триметоприм/сульфаметоксазол), цефалоспоринам 2, 3 и 4 поколения (цефепим, цефтазидим, цефтриаксон, цефуроксим, цефуроксим/аксетил), фторхинолонам (ципрофлоксацин). Штаммы Enterococcus faecium устойчивы к ампициллину, амоксицилин/клавуланту, гентамицину, имипенему и ципрофлоксацину. Исследованные культуры S. aureus не подвергались действию антибиотиков следующих групп: пенициллинам, гликопептидам, линкозамидам, тетрациклинам, цефалоспоринам 2 поколения (а именно цефокситину) и макроклидам. Полученные данные по антибиотикорезистентности ведущих культур микроорганизмов соответствуют показателям, указанными в литературе (Сравнительный анализ…, 2018).

Рисунок 1 – Количество штаммов ведущих культур микроорганизмов,
резистентных к антибиотикам

По итогам исследования можно судить о том, что препараты из группы аминогликозидов (гентамицин), пенициллинов (ампициллин, амоксицилин/клавулант), тетрациклинов, фторхинолонов, цефалоспорины 3 (цефоперазон/сульбактам, цефтазидим) и 4 (цефепим) поколения практически полностью утратили способность подавлять рост патогенных микроорганизмов. Их необходимо заменить на более новые и действенные в лечении заболеваний препараты.

Библиографический список
Гавриленко Г.Э., Грицкевич Е.Р. Анализ антибиотикорезистентности бактерий, выделяемых в пульмонологических отделениях учреждений здравоохранения г. Могилева и Могилевской области / Сахаровские чтения 2018 года: экологические проблемы XXI века. 2018. Ч. 1. С. 218–220.
Дебабов Д.Г. Устойчивость к антибиотикам: происхождение, механизмы, подходы к преодолению // Биотехнология. 2012. № 4. С. 7–17.
Основные направления научной работы коллектива краевой клинической больницы № 2 Министерства здравоохранения Краснодарского края / Г.А. Пенжоян [и др.] // Кубанский научный медицинский вестник. 2018. № 25 (3). С. 178–185.
Петрова Л.В., Шумливая М.О., Каримуллина К.А. Микробный пейзаж гемокультур пациентов реанимационных отделений Краевой клинической больницы № 2 г. Краснодара / Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2018. Т. 20. С. 33–34.
Сравнительный анализ микробиологического мониторинга в отделениях реанимации и интенсивной терапии новорожденных ГБУЗ «ККБ № 2» / Н.Е. Шабанова [и др.] // Кубанский научный медицинский вестник. 2018. № 25 (3). С. 125–128.
Толочко М.В., Несвижский Ю.В. Пути решения проблемы устойчивости микроорганизмов к антимикробным химиотерапевтическим препаратам / Материалы VI Всероссийской научно-практической конференции с международным участием молодых ученых и специалистов «Окружающая среда и здоровье. Гигиена и экология урбанизированных территорий», посвященной 85-летию ФГБУ «НИИ ЭЧ и ГОС ИМ. А.Н. Сысина» Минздрава России. 2016. С. 474–480.